Журнал
ONCOLOGY.RU

Обработка изображений в медицине
и морфометрия капиллярной сети опухолей

М.В. Спринджук, А.П. Кончиц


Cigdem Demir и Bulent Yener (2005) [1] предлагают классифицировать типы свойств изображений гистопатологического препарата следующим образом (см. также рис. 1 и 2, таб. 1-3):

  1. Морфологические;
  2. Текстурные;
  3. Фрактальные;
  4. Топологические;
  5. Основанные на интенсивности изображений.

(По Б. Вейн и соавт. 2004, Antonio Di Leva, 2010)

Рисунок 1. (По Б. Вейн и соавт. 2004, Antonio Di Leva, 2010)


Уровни морфометрического исследования, рисунок авторов по Antonio Di Leva, 2010)

Рисунок 2. Уровни морфометрического исследования, рисунок авторов по Antonio Di Leva, 2010.


Таблица 1. Обзор применения средств морфометрического анализа.

Используемая окулярная сетка или программное обеспечение для обработки гистологических изображений Области и цели исследования Источник литературы
Гратикула Челкли Для измерения плотности микрососудов 67-126
Сетка Вейбеля Для определения отношения площадь/объем в биоптатах 127-132
Сетка Автандилова Метод применялся для морфометрии биоптатов ЖКТ 133, 134
Программное обеспечение Компьютерные программы применялись для морфологического описания и анализа сети микрососудов 59, 135-159

Таблица 2. Обзор применения методов математической морфологии для изучения морфологии ангиогенеза.

Математический метод изучения морфологии ангиогенеза Основные области и цели применения метода, комментарии Литературная ссылка
Фрактальный анализ Исследования, где применялись принципы фрактальной геометрии для исследования морфологии ангиогенеза 64, 149, 160-188
Синтактический анализ Единственный источник, где обсуждается применение анализа Вороной 169
Изучение фактора формы паттерна ангиогенеза и его пространственной организации Методики применялись как для гистологических изображений, так и для изучения «живых» опухолей и создания трехмерной сосудистой сети 189-204

Таблица 3. Исследования, в которых изучалась морфология ангиогенеза и лимфоангиогенеза в тканях эндокринных органов (звездочкой отмечены исследования, где применялся анализ изображений).

Органная локализация Источники
Поджелудочная железа*
Яичники*
Щитовидная железа*
Паращитовидные железы*
Надпочечники
Яички
Шишковидное тело
205-209
189, 210-214
5, 195, 215-217
218, 219
220-223
224-249
250, 251

Морфологические признаки предоставляют информацию о размерах и форме клетки. Примеры – радиус, периметр, компактность (квадрат периметра/площадь), гладкость границ, наибольшая ось сечения, симметрия, вогнутость. Текстура – это набор взаимосвязанных пикселей, которые повторяются на изображении. Текстурные (структурные) признаки предоставляют информацию о вариации интенсивности поверхности путем получения таких свойств как гладкость, шероховатость и регулярность. Фрактал – это объект, обладающий таким свойством как внутреннее единство схожести (подобия), т.е. выглядит одинаковым на разных увеличениях. При фрактальном анализе измеряется степень самоподобия. Основные свойства этого подхода – это фрактальный размер и лакунарность. Топологические свойства предоставляют информацию о структуре ткани путём вычисления пространственного распределения (взаимоотношения) клеток.

Самым распространенным методом анализа интенсивности изображений является использование цветовых гистограмм. Они не предоставляют информацию о пространственном распределении пикселей. Пример такого анализа – определение оптической плотности пиксела, путем конвертирования значения уровня серого в соответствующее значение оптической плотности. Могут определяться значения пикселей отдельного цветового канала или взаимосвязь между значениями пикселей различных каналов [1].

Публикаций по теме лимфангиогенеза и лимфогенного метастазирования опухолей щитовидной железы немного [2-26]. Движущая сила научного продвижения этой области – недавнее появление лимфатических маркеров; среди них D2-40, который применялся в нашем исследовании. Антитело D2-40 первоначально реагирует с O-связанным гликопротеином, экспрессирующемся на лимфатическом эндотелии, эмбриональном яичке и опухолях яичек.

На сегодняшний день считается, что основные биохимические факторы развития лимфангиогенеза любой локализации – сосудистые эндотелиальные факторы роста (C, D, А, в порядке значения). Неизвестны механизмы увеличения VEGF (фактора роста эндотелия сосудов), и природа молекул, выполняющих активацию существующего лимфатического эндотелия, вызывающего увеличение размера опухоли с последующей продукцией митогенных и хемотаксических факторов или альтераций лимфатического эндотелия.

Hall [27] и сотрудники, 2003, были первыми, кто исследовал морфологические особенности опухолевой лимфатической сети у больных, имеющих папиллярные карциномы щитовидной железы. В исследовании, используя LYVE-1 (Lymphatic vessel endothelial hyaluronan receptor) как маркера, сетки Chalkleу (см. рис. 3-6) для подсчета сосудов, высокая ПЛК (плотность лимфатических капилляров) была связана с наличием региональных метастазов лимфатического узла. Однако наличие внутриопухолевого лимфангиогенеза не было значительным предиктором рецидива опухоли (P = 0.42). Интересно, что эксперимент Cheong [28, 29] и соавторов (2010) не показал значительных различий в плотности лимфатических и кровеносных капилляров сосочковых карцином щитовидной железы и микрокарцином (<1 см в размере). Однако более высокая ПЛК отмечалась у больных старше 45 лет (более четко в группе крупных карцином) и имеющих мультицентричность с экстратиреоидным распространением. Мультицентричность была определена как наличие дополнительных фокусов опухоли, состоящих из нескольких несмежных с первичной опухолью участков. Экстратиреоидное распространение было определено как прорастание опухоли вне капсулы, окружающей мягкие ткани железы.

Окулярная сетка Weibel 1. Состоит из 15 линий равной длины соединяющих вертикали правильной шестиугольной сети точек [65]

Рисунок 3. Окулярная сетка Weibel 1.
Состоит из 15 линий равной длины, соединяющих вертикали
правильной шестиугольной сети точек [65].


Окулярная сетка Челкли [66]

Рисунок 4. Окулярная сетка Челкли [66].


Варианты окулярных вставок для измерений и планиметрий

Варианты окулярных вставок для измерений и планиметрий

Рисунок 5 (а, б). Варианты окулярных вставок для измерений и планиметрий

Классическим морфометрическим параметром оценки сети лимфатических капилляров является их площадь, прокрашенная диагностическим маркером [30-37]. В нашем исследовании применены новые параметры изображений. Как оказалось, доля мелких и крупных объектов характеризует морфологию сети лимфатических сосудов более подробно, чем просто площадь прокрашенного, и выявляет свою прогностическую ценность. Новые параметры изображений позволяют классифицировать морфологию ангиогенеза и выделять подгруппы морфологических паттернов.

Оценка степени активности ангиогенеза на гистологическом препарате

Ангиогенез можно рассматривать как на уровне организма пациента, так и на уровнях системы органов, индивидуального органа, тканей и отдельных клеток. Ангиогенез на микропрепарате оценивается либо глазом врача-патолога, масштабной сеткой (graticule) и с помощью стереологических методов, или с помощью программного обеспечения (Goddard и соавт., 2002) [38-40]. Как правило, обработка изображений, по которому оценивается степень ангиoгенеза, проходит в несколько этапов [41].

Первый метод количественной оценки ангиогенеза на примере неоваскуляризации опухолей мозга предложил Brem (1972) [42].

Изначально, количественной оценкой ангиогенеза на гистологическом срезе органа являлась площадь сосудов (vessel area), окрашенная красителем, [43] или иммуноцитохимическим методом. Поиск надежных биомаркеров ангиогенеза продолжается и сегодня [44-48], и, вместе с этим направлением, предлагаются новые критерии оценки изображений ангиогенеза, полученные в результате сложного процесса приготовления микропрепарата изучаемой ткани. На сегодняшний день наибольшее распространение среди параметров оценки ангиогенеза получил показатель плотности микрососудов (microvessel density), определяемой в точках максимальной васкуляризации («горячих точках» – hot spots). Этот подход считается «золотым стандартом» оценки активности ангиогенеза в тканях опухолей [39, 47, 49-52]. Его авторы, Weidner с сотрудниками, в начале девяностых годов разработали и применили эту методику для исследования карцином молочной железы и простаты [42].

Ангиогенез (измеренный как плотность микрососудов опухоли) коррелирует с поведением опухоли (см. таб. 3 и рис. 6-9). Факты свидетельствуют, что интенсивность ангиогенеза коррелирует с развитием метастазов, плохим прогнозом, в том числе уменьшением срока выживаемости у пациентов, страдающих раком молочной железы, мочевого пузыря, желудка (Turner и соавт., 2003) [53]. Что касается исследования ангиогенной активности в тканях эпителиального рака яичников, то в этой области сообщаются противоречивые сведения о значении плотности микрососудов как предсказательном факторе клинического прогноза и критерии дифференциальной диагностики. Bamberger&Perret, 2002, пришли к заключению, что экспрессия VEGF и анализ плотности микрососудов для оценки васкуляризации эпителиальной карциномы яичников не являются настолько полезными для предсказания прогноза, как при исследовании карциномы молочной железы, и что не наблюдается четкой корреляции между значением плотности микрососудов и возрастом, степенью дифференциации опухоли, её размерами, асцитом, ростом опухоли, причем наблюдаются колебания этой зависимости для различных гистологических подтипов рака яичников [54]. Дальнейшие исследования также выявили аналогичные противоречия [47]. Можно предположить, что разные выводы исследований обусловлены разнородностью генотипов обследуемых пациентов в ракурсе экспрессии сосудистых биомаркеров, либо гетерогенностью микропрепаратов. О недостатках и ограничениях метода определения плотности микрососудов в «горячих точках» высказывались Weidner [55] и Brown [44]. Последний, на основе личных наблюдений и анализа исследований других ученых, пришел к выводу, что этот метод не может применяться для точной оценки активности ангиогенеза в широкомасштабных клинических исследованиях. Таким образом, недостатки «золотого стандарта» оценки процессов ангиогенеза заставляет искать и оценивать новые критерии анализа изображений микропрепаратов окрашенных капилляров.

Альтернативным подходом к количественной оценке ангиогенеза является подсчет микрососудов в случайно (рандомизированно) выбранных областях изображений или в специфически определенных регионах, таких как края опухоли. Дают ли оба названные методы одинаковую биологическую информацию и лучше ли они других методов – этот вопрос открыт для дискуссии (Kim и соавт., 2003 in «An original approach…»). Помимо самой плотности микрососудов, может вычисляться и среднее значение пропорции поверхности микрососудов (mean microvessel surface proportions), также фракция площади сосудов (vascular area fraction), абсолютное число микрососудов и их периметр, длины и площади определенных категорий капилляров [40, 56, 57].

Когда вычисляется плотность микрососудов, отдельный объект, прокрашенный, например, маркером CD34, регистрируется как один сосуд. Считается, что по своей природе иммунохимическое окрашивание сосудов не является идеальным для диагностических целей, так как при такой окраске прилегающие сосуды и даже группа сосудов могут быть распознаны как один объект (Goddard и соавт., 2002) [39, 52].

После бинаризации изображений, плотность микрососудов оценивается путем подсчета общего числа белых пикселей на определенном поле. Такие показатели как среднее число концевых точек капилляров (vessel end points), узловых точек разветвления на каждом изображении (vessel branch points/nodes), средняя общая длина сосудов для данного изображений в пикселях вычисляется после скелетонизации изображений (Аmano и соавт., Japan, 2007) [58].

Объектом измерения ангиогенеза программы AngioQuant (программного обеспечения бесплатно доступного для научно-исследовательских целей по адресу www.сs.tut.fi) является сеть соединенных трубчатых (тубулярных) структур капилляров. Это программное обеспечение позволяет определять длину и размеры этих тубулярных комплексов, также как и число соединений (точек ветвления) в самом комплексе (Antti Niemisto, Finland, 2005) [59]. Исследователи, разработавшие это программное обеспечение, пришли к выводу, что распределение длин тубулярных комплексов в экспериментальном ангиогенезе подчиняется закону степени (power law).

В своих статьях об измерении ангиогенеза посредством анализа изображений препаратов мембраны эмбриона цыпленка и аортального кольца крысы, Blacher и соавт., 2001, 2005 [60, 61], упоминают такие характеристики оценки ангиогенеза как плотность длины сосудов (vessel length density), в частности радиально расположенных капилляров, размеры фракций капилляров (fractial dimension), средний диаметр капилляра.

Другие подходы к оценке изображений ангиогенеза – это анализ цветов полученного изображений, цветовая сегментация изображений (сolor segmentation), сравнение цветов пикселей (pixel colour comparisson), анализ текстуры изображений гистологического препарата (Rodriguez и соавт., 2002, Laitakari, 2003) [62, 63]. Последний метод характеризует энтропию, корреляцию и контраст изображений.

Интересный подход к анализу гистологического препарата ангиогенеза – применение фрактального и синтаксического анализа (fractal & syntactic analysis) c применением спектра декскрипторов, многогранно описывающих объекты изображений (Grizzi и соавт., 2005) [64].


Окулярные сетки применяются в гистологии и смежных науках со времен изобретения микроскопа. В настоящее время «золотой» стандарт морфометрической оценки микропрепарата ангиогенеза это применение сетки-гратикулы Сhalkley, предложеной в 1943 году. Широкое применение микроскопической техники в различных областях науки и техники обусловило спрос на методы измерения микрообъектов. Сейчас коммерчески доступны разнообразные измерительные инструменты для оптического оборудования. Однако патология и гистопатология уже давно стали «цифровыми» и математическими. Программное обеспечение развилось от примитивных медленно вычисляющих арифметических оболочек до сложно организованных многофункциональных, удобных для пользователя вычислительных систем, работающих на разных платформах и позволяющих реализовывать те идеи и цели, которые сравнительно недавно были невозможны по причине недостатков как самих персональных ЭВМ, так и по причине ограничений возможностей самих языков программирования и сред разработки, в которых программное обеспечение создается. Накопленный опыт применения объектно-ориентированнного программирования и открытые библиотеки кода, а также возможности экстрагировать сам код из элементов написанной программы, инструменты для трансляции кода одного языка в другой, а также его коррекции и автоматической генерации позволяют разработчикам быстрее осваивать профессию и разрабатывать программное обеспечение.

На сегодняшний день учёным доступно как бесплатно, так и коммерчески, множество пакетов программных оболочек для обработки изображений и морфометрии. Основные недостатки современного программного обеспечения:

  1. сложность в использовании, особенно для лиц, не имеющих достаточного опыта пользования персональным компьютером, причиной этой проблемы может быть непонятность инструкции и дефекты дизайна и функциональной организации интерфейса;
  2. большой объем программы и высокие требования к системе и платформе, на которой программное обеспечение запускается;
  3. невозможность беспрепятственнного запуска одновременно нескольких программ с целью быстрой обработки изображений, также сбои в функционировании при одновременной работе с другими программами;
  4. недостаток визуализации обрабатываемых программой данных, когда на выходе получаются только числа без изображения решаемой проблемы;
  5. неудобства, связанные с экстракцией, организацией и хранением параметров полученных после обработки изображений.

Рисунки 6, 7, 8, 9. Принципы канцерогенеза и лечения рака (рисунки авторов).

Принципы канцерогенеза и лечения рака (рисунки авторов)

Принципы канцерогенеза и лечения рака (рисунки авторов)

Принципы канцерогенеза и лечения рака (рисунки авторов)

Принципы канцерогенеза и лечения рака (рисунки авторов)

В заключение мы решили перечислить области науки, где обработка изображений может применяться:

  1. анализ изображений микробиологических посевов с окружающей среды (водоемов, грязных рук, воздуха операционных и т.п.) [252-258];
  2. для изучения прионных болезней [259, 260];
  3. для изучения морфологии грибов, хламидий, уреоплазм, микобактерий, там, где имеет прогностическое или другое клиническое значение количество организмов и их морфологическая характеристика [261-272];
  4. анализ тканей для изучения вирусного канцерогенеза (вирусов герпеса, Эбштайн-Барр, папиллома-вируса) [273-283];
  5. анализ изображений сигналов гибридизации in situ [284];
  6. анализ изображений эндоскопии (кишечника, пищевода, желудка, трахеи, глазного дна, шейки матки, мочевого пузыря, барабанной перепонки) [285-313];
  7. обработка изображений в репродуктивной медицине (яйцеклеток) [314, 315];
  8. изучения микро- и макромицетов и спорообразующих микроорганизмов [272];
  9. для подсчета микроорганизмов при воздействии на микробную культуру бактерицидных и бактериостатических веществ;
  10. для количественной оценки микропрепаратов костного мозга и крови [276, 316-323];
  11. для поиска и подчета трихенеллы и других паразитов в мышечных и других тканях животных и человека [324-335];
  12. анализ изображений структуры трансплантируемых тканей, как они видоизменяются в организме хозяина [265];
  13. анализ изображений для поиска токсинов, опасных микроорганизмов в продуктах питания (для подсчета критически допустимого количества микробов) [252-258];
  14. для анализа изображений электронного микроскопа (подсчета органелл клеток, их морфологии) [336-340].

Список литературы

  1. Demir C, Yener B. Automated cancer diagnosis based on histopathological images: a systematic survey. Rensselaer Polytechnic Institute, Tech Rep. 2005.
  2. Koo BS, Lim HS, Lim YC, Yoon YH, Kim YM, Park YH, et al. Occult contralateral carcinoma in patients with unilateral papillary thyroid microcarcinoma. Ann Surg Oncol. 2010 Apr;17(4):1101-5.
  3. Koo BS, Seo ST, Lee GH, Kim JM, Choi EC, Lim YC. Prophylactic lymphadenectomy of neck level II in clinically node-positive papillary thyroid carcinoma. Ann Surg Oncol. 2010 Jun;17(6):1637-41.
  4. Koo JS, Kwak JY, Jung W, Hong S. Importance of foamy macrophages only in fine needle aspirates to cytologic diagnostic accuracy of cystic metastatic papillary thyroid carcinoma. Acta Cytol. 2010 May-Jun;54(3):249-54.
  5. Liang QC, Wei QY, Fan SQ. [Expression of VEGF-C and angiogenesis, and lymphangiogenesis in papillary thyroid carcinoma]. Zhong Nan Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban. 2006 Jun;31(3):414-6, 9.
  6. Macdonald KI, Taylor SM, Cavanagh J, Trites JR, Bullock MJ, Hart RD. Level VI node size as a predictor of malignancy in papillary thyroid cancer. J Otolaryngol Head Neck Surg. 2010 Apr;39(2):136-41.
  7. Martino A, Monaco L, Golia R, Miletto P, Capasso P, Lombardi C, et al. A new radioguided procedure for localization and surgical treatment of neck node metastasis of papillary thyroid cancer. J Endocrinol Invest. 2010 May;33(5):339-42.
  8. Mitchell JC, Parangi S. Angiogenesis in benign and malignant thyroid disease. Thyroid. 2005 Jun;15(6):494-510.
  9. Nakamura Y, Yasuoka H, Zuo H, Takamura Y, Miyauchi A, Nakamura M, et al. Nitric oxide in papillary thyroid carcinoma: induction of vascular endothelial growth factor D and correlation with lymph node metastasis. J Clin Endocrinol Metab. 2006 Apr;91(4):1582-5.
  10. Salter KD, Andersen PE, Cohen JI, Schuff KG, Lester L, Shindo ML, et al. Central nodal metastases in papillary thyroid carcinoma based on tumor histologic type and focality. Arch Otolaryngol Head Neck Surg. 2010 Jul;136(7):692-6.
  11. Scarpino S, Di Napoli A, Melotti F, Talerico C, Cancrini A, Ruco L. Papillary carcinoma of the thyroid: low expression of NCAM (CD56) is associated with downregulation of VEGF-D production by tumour cells. J Pathol. 2007 Aug;212(4):411-9.
  12. Vergez S, Sarini J, Percodani J, Serrano E, Caron P. Lymph node management in clinically node-negative patients with papillary thyroid carcinoma. Eur J Surg Oncol. 2010 Aug;36(8):777-82.
  13. Wang W, Wang H, Teng X, Mao C, Teng R, Zhao W, et al. Clonal analysis of bilateral, recurrent, and metastatic papillary thyroid carcinomas. Hum Pathol. 2010 Sep;41(9):1299-309.
  14. Yasuoka H, Nakamura Y, Zuo H, Tang W, Takamura Y, Miyauchi A, et al. VEGF-D expression and lymph vessels play an important role for lymph node metastasis in papillary thyroid carcinoma. Mod Pathol. 2005 Aug;18(8):1127-33.
  15. Yu XM, Lo CY, Chan WF, Lam KY, Leung P, Luk JM. Increased expression of vascular endothelial growth factor C in papillary thyroid carcinoma correlates with cervical lymph node metastases. Clin Cancer Res. 2005 Nov 15;11(22):8063-9.
  16. Yuce I, Cagli S, Bayram A, Karasu F, Guney E. Regional metastatic pattern of papillary thyroid carcinoma. Eur Arch Otorhinolaryngol. 2010 Mar;267(3):437-41.
  17. Al-Saif O, Farrar WB, Bloomston M, Porter K, Ringel MD, Kloos RT. Long-term efficacy of lymph node reoperation for persistent papillary thyroid cancer. J Clin Endocrinol Metab. 2010 May;95(5):2187-94.
  18. Baek SK, Jung KY, Kang SM, Kwon SY, Woo JS, Cho SH, et al. Clinical risk factors associated with cervical lymph node recurrence in papillary thyroid carcinoma. Thyroid. 2010 Feb;20(2):147-52.
  19. de la Torre NG, Buley I, Wass JA, Turner HE. Angiogenesis and lymphangiogenesis in thyroid proliferative lesions: relationship to type and tumour behaviour. Endocr Relat Cancer. 2006 Sep;13(3):931-44.
  20. French JD, Weber ZJ, Fretwell DL, Said S, Klopper JP, Haugen BR. Tumor-associated lymphocytes and increased FoxP3+ regulatory T cell frequency correlate with more aggressive papillary thyroid cancer. J Clin Endocrinol Metab. 2010 May;95(5):2325-33.
  21. Furtado GC, Marinkovic T, Martin AP, Garin A, Hoch B, Hubner W, et al. Lymphotoxin beta receptor signaling is required for inflammatory lymphangiogenesis in the thyroid. Proc Natl Acad Sci U S A. 2007 Mar 20;104(12):5026-31.
  22. Giorgadze TA, Baloch ZW, Pasha T, Zhang PJ, Livolsi VA. Lymphatic and blood vessel density in the follicular patterned lesions of thyroid. Mod Pathol. 2005 Nov;18(11):1424-31.
  23. Hung CJ, Ginzinger DG, Zarnegar R, Kanauchi H, Wong MG, Kebebew E, et al. Expression of vascular endothelial growth factor-C in benign and malignant thyroid tumors. J Clin Endocrinol Metab. 2003 Aug;88(8):3694-9.
  24. Jiang HG, Gao M, Tang WP, Li FH, Cai QZ. [Expression and significance of VEGF, VEGF-C, and VEGF-D in papillary thyroid carcinoma]. Ai Zheng. 2005 Sep;24(9):1136-9.
  25. Kaneko K, Abe K, Baba S, Tanabe Y, Yabuuchi H, Hatakenaka M, et al. Can calcification predict 131I accumulation on metastatic lymph nodes in papillary thyroid carcinoma patients receiving 131I therapy? Comparison of CT, 131I WBS and 18F-FDG PET/CT. Eur Radiol. 2010 Feb;20(2):477-83.
  26. Klein M, Catargi B. VEGF in physiological process and thyroid disease. Ann Endocrinol (Paris). 2007 Dec;68(6):438-48.
  27. Hall FT, Freeman JL, Asa SL, Jackson DG, Beasley NJ. Intratumoral lymphatics and lymph node metastases in papillary thyroid carcinoma. Archives of Otolaryngology-Head & Neck Surgery. 2003;129(7):716-9.
  28. Cheong H, Kang H, Kim HK, Bae JY, Song DE, Cho MS, et al. Microvessel and Lymphatic Vessel Density and VEGFR-3 Expression of Papillary Thyroid Carcinoma with Comparative Analysis of Clinicopathological Characteristics. Korean Journal of Pathology. 2010;44(3):243-51.
  29. Koo H, Cheong H. Microvessel and lymphatic vessel density and VEGFR-3 expression of papillary carcinoma of thyroid gland. Virchows Archiv. 2009;455:379-80.
  30. Matsumoto N, Mukae S, Tsuda H, Sawada A, Okazaki Y, Nagai K, et al. Prognostic value of LYVE-1-positive lymphatic vessel in tongue squamous cell carcinomas. Anticancer Res. 2010 Jun;30(6):1897-903.
  31. van Niekerk CG, Hulsbergen-van de Kaa CA, Barentsz JO, Witjes JA, van der Laak JA. Quantitative analysis of lymph vessel characteristics in organ confined prostate cancer. Prostate. 2010 Jul 14.
  32. Goyal S, Chauhan SK, El Annan J, Nallasamy N, Zhang Q, Dana R. Evidence of corneal lymphangiogenesis in dry eye disease: a potential link to adaptive immunity? Arch Ophthalmol. 2010 Jul;128(7):819-24.
  33. Chen D, Zheng J, Li H, Wang Q, Jiao X. Computer-assisted morphometric analysis of lymphatic vessel changes in hamster tongue carcinogenesis. J Oral Pathol Med. 2010 Aug 1;39(7):518-24.
  34. Girling JE, Donoghue JF, Lederman FL, Cann LM, Achen MG, Stacker SA, et al. Vascular endothelial growth factor-D over-expressing tumor cells induce differential effects on uterine vasculature in a mouse model of endometrial cancer. Reprod Biol Endocrinol. 2010;8:84.
  35. Heindl LM, Hofmann-Rummelt C, Adler W, Holbach LM, Naumann GO, Kruse FE, et al. Tumor-associated lymphangiogenesis in the development of conjunctival squamous cell carcinoma. Ophthalmology. 2010 Apr;117(4):649-58.
  36. Garcia EA, Simoes K, Wakamatsu A, Ressio RA, Alves VA, Longatto-Filho A, et al. Lymphatic vessel density and VEGF-C expression are significantly different among benign and malignant thyroid lesions. Endocr Pathol. 2010 Jun;21(2):101-7.
  37. Zhang L, Yankelevitz DF, Henschke CI, Reeves AP, Vazquez MF, Carter D. Variation in vascular distribution in small lung cancers. Lung Cancer. 2010 Jun;68(3):389-93.
  38. Fox S. Tumour angiogenesis and prognosis. Histopathology. 1997;30(3):294.
  39. Goddard JC, Sutton CD, Furness PN, Kockelbergh RC, O'Byrne KJ. A computer image analysis system for microvessel density measurement in solid tumours. Angiogenesis. 2002;5(1-2):15-20.
  40. Kim N, Elie N, Plancoulaine B, Herlin P, Coster M. An original approach for quantification of blood vessels on the whole tumour section. Analytical cellular pathology. 2003;25(2):63-75.
  41. Bensebaa K, Suzim A. Image Analysis in Histological Sections. Segmentation and Quantification of Tumor Angiogenesis Areas.
  42. Ribatti D. Judah Folkman, a pioneer in the study of angiogenesis. Angiogenesis. 2008;11(1):3-10.
  43. Parke A, Bhattacherjee P, Palmer RM, Lazarus NR. Characterization and quantification of copper sulfate-induced vascularization of the rabbit cornea. Am J Pathol. 1988 Jan;130(1):173-8.
  44. Brown AP, Citrin DE, Camphausen KA. Clinical biomarkers of angiogenesis inhibition. Cancer Metastasis Rev. 2008 Sep;27(3):415-34.
  45. De Wever O, Derycke L, Hendrix A, De Meerleer G, Godeau F, Depypere H, et al. Soluble cadherins as cancer biomarkers. Clin Exp Metastasis. 2007;24(8):685-97.
  46. Karathanasis E, Chan L, Karumbaiah L, McNeeley K, D'Orsi CJ, Annapragada AV, et al. Tumor Vascular Permeability to a Nanoprobe Correlates to Tumor-Specific Expression Levels of Angiogenic Markers. PLoS ONE. 2009;4(6).
  47. Merritt WM, Sood AK. Markers of angiogenesis in ovarian cancer. Dis Markers. 2007;23(5-6):419-31.
  48. Virostko J, Xie J, Hallahan DE, Arteaga CL, Gore JC, Manning HC. A Molecular Imaging Paradigm to Rapidly Profile Response to Angiogenesis-directed Therapy in Small Animals. Mol Imaging Biol. 2009;11(3):204-12.
  49. Wild R, Ramakrishnan S, Sedgewick J, Griffioen A. Quantitative assessment of angiogenesis and tumor vessel architecture by computer-assisted digital image analysis: effects of VEGF–toxin conjugate on tumor microvessel density. Microvascular Research. 2000;59(3):368-76.
  50. Lee JS, Kim HS, Jung JJ, Kim YB, Lee MC, Park CS. Expression of vascular endothelial growth factor in invasive ductal carcinoma of the breast and the relation to angiogenesis and p53 and HER-2/neu protein expression. Appl Immunohistochem Mol Morphol. 2002 Dec;10(4):289-95.
  51. Hardee ME, Cao Y, Fu P, Jiang X, Zhao Y, Rabbani ZN, et al. Erythropoietin Blockade Inhibits the Induction of Tumor Angiogenesis and Progression. PLoS ONE. 2007;2(6).
  52. Goddard JC, Sutton CD, Furness PN, O'Byrne KJ, Kockelbergh RC. Microvessel density at presentation predicts subsequent muscle invasion in superficial bladder cancer. Clin Cancer Res. 2003 Jul;9(7):2583-6.
  53. Turner HE, Harris AL, Melmed S, Wass JA. Angiogenesis in endocrine tumors. Endocr Rev. 2003 Oct;24(5):600-32.
  54. Bamberger ES, Perrett CW. Angiogenesis in epithelian ovarian cancer. Mol Pathol. 2002 Dec;55(6):348-59.
  55. Weidner N. Intratumor microvessel density as a prognostic factor in cancer. Am J Pathol. 1995 Jul;147(1):9-19.
  56. Karnabatidis D, Dimopoulos J, Siablis D, Papazafiropoulos D, Kalogeropoulou C, Nikiforidis G. Quantification of the ionising radiation effect over angiogenesis in the chick embryo and its chorioallantoic membrane by computerised analysis of angiographic images. Acta Radiologica. 2001;42(3):333-8.
  57. Olewniczak S, Chosia M, Kolodziej B, Kwas A, Kram A, Domagala W. Angiogenesis as determined by computerised image analysis and the risk of early relapse in women with invasive ductal breast carcinoma. Pol J Pathol. 2003;54(1):53-9.
  58. Amano M, Suzuki M, Andoh S, Monzen H, Terai K, Williams B, et al. Antiangiogenesis therapy using a novel angiogenesis inhibitor, anginex, following radiation causes tumor growth delay. Int J Clin Oncol. 2007 Feb;12(1):42-7.
  59. Niemisto A, Dunmire V, Yli-Harja O, Zhang W, Shmulevich I. Robust quantification of in vitro angiogenesis through image analysis. IEEE Trans Med Imaging. 2005 Apr;24(4):549-53.
  60. Blacher S, Devy L, Burbridge M, Roland G, Tucker G, Noлl A, et al. Improved quantification of angiogenesis in the rat aortic ring assay. Angiogenesis. 2001;4(2):133-42.
  61. Blacher S, Devy L, Hlushchuk R, Larger E, Lamandй N, Burri P, et al. Quantification of angiogenesis in the chicken chorioallantoic membrane (CAM). Image Anal Stereol. 2005;24:169-80.
  62. Rodrнguez-Manzaneque J, Lane T, Ortega M, Hynes R, Lawler J, Iruela-Arispe M. Thrombospondin-1 suppresses spontaneous tumor growth and inhibits activation of matrix metalloproteinase-9 and mobilization of vascular endothelial growth factor. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2001;98(22):12485.
  63. Laitakari J. Computer-assisted Quantitative Image Analysis of Cell Proliferation, Angiogenesis and Stormal Markers in Experimental and Laryngeal Tumor Development: Oulun yliopisto; 2003.
  64. Grizzi F, Russo C, Colombo P, Franceschini B, Frezza EE, Cobos E, et al. Quantitative evaluation and modeling of two-dimensional neovascular network complexity: the surface fractal dimension. BMC Cancer. 2005 Feb 8;5:14.
  65. http://www.emsdiasum.com/microscopy/products/magnifier/graticules.aspx.
  66. http://www.2spi.com/catalog/magnifiers/eye-piece-reticles-Graticules-Chalkley-Point-Array-Mode-NG52.shtml.
  67. Shishido-Hara Y, Kurata A, Fujiwara M, Itoh H, Imoto S, Kamma H. Two cases of breast carcinoma with osteoclastic giant cells: Are the osteoclastic giant cells pro-tumoural differentiation of macrophages? Diagn Pathol. 2010;5:55.
  68. Kumar I, Staton CA, Cross SS, Reed MW, Brown NJ. Angiogenesis, vascular endothelial growth factor and its receptors in human surgical wounds. Br J Surg. 2009 Dec;96(12):1484-91.
  69. Brockenbrough JS, Morihara JK, Hawes SE, Stern JE, Rasey JS, Wiens LW, et al. Thymidine kinase 1 and thymidine phosphorylase expression in non-small-cell lung carcinoma in relation to angiogenesis and proliferation. J Histochem Cytochem. 2009 Nov;57(11):1087-97.
  70. Dhakal HP, Bassarova A, Naume B, Synnestvedt M, Borgen E, Kaaresen R, et al. Breast carcinoma vascularity: a comparison of manual microvessel count and Chalkley count. Histol Histopathol. 2009 Aug;24(8):1049-59.
  71. da Rocha AO, Coutinho LM, Schall JG. The prognostic value of angiogenesis by Chalkley counting in gallbladder carcinoma. Hepatogastroenterology. 2009 Jan-Feb;56(89):34-8.
  72. Fox SB. Assessing tumor angiogenesis in histological samples. Methods Mol Biol. 2009;467:55-78.
  73. Baldewijns MM, Roskams T, Ballet V, Van den Eynden GG, Van Laere SJ, Van der Auwera I, et al. A low frequency of lymph node metastasis in clear-cell renal cell carcinoma is related to low lymphangiogenic activity. BJU Int. 2009 Jun;103(12):1626-31.
  74. Engels K, du Bois A, Harter P, Fisseler-Eckhoff A, Kommoss F, Stauber R, et al. VEGF-A and i-NOS expression are prognostic factors in serous epithelial ovarian carcinomas after complete surgical resection. J Clin Pathol. 2009 May;62(5):448-54.
  75. Offersen BV, Alsner J, Ege Olsen K, Riisbro R, Brunner N, Sorensen FB, et al. A comparison among HER2, TP53, PAI-1, angiogenesis, and proliferation activity as prognostic variables in tumours from 408 patients diagnosed with early breast cancer. Acta Oncol. 2008;47(4):618-32.
  76. Depasquale I, Thompson WD. Prognosis in human melanoma: PAR-1 expression is superior to other coagulation components and VEGF. Histopathology. 2008 Mar;52(4):500-9.
  77. Sardari Nia P, Colpaert C, Vermeulen P, Weyler J, Pezzella F, Van Schil P, et al. Different growth patterns of non-small cell lung cancer represent distinct biologic subtypes. Ann Thorac Surg. 2008 Feb;85(2):395-405.
  78. Netto GC, Bleil CB, Hilbig A, Coutinho LM. Immunohistochemical evaluation of the microvascular density through the expression of TGF-beta (CD 105/endoglin) and CD 34 receptors and expression of the vascular endothelial growth factor (VEGF) in oligodendrogliomas. Neuropathology. 2008 Feb;28(1):17-23.
  79. Offersen BV, Riisbro R, Knoop A, Brunner N, Overgaard J. Lack of association between level of Plasminogen Activator Inhibitor-1 and estimates of tumor angiogenesis in early breast cancer. Acta Oncol. 2007;46(6):782-91.
  80. Staton CA, Chetwood AS, Cameron IC, Cross SS, Brown NJ, Reed MW. The angiogenic switch occurs at the adenoma stage of the adenoma carcinoma sequence in colorectal cancer. Gut. 2007 Oct;56(10):1426-32.
  81. Salgado KB, Toscani NV, Silva LL, Hilbig A, Barbosa-Coutinho LM. Immunoexpression of endoglin in brain metastasis secondary to malignant melanoma: evaluation of angiogenesis and comparison with brain metastasis secondary to breast and lung carcinomas. Clin Exp Metastasis. 2007;24(6):403-10.
  82. Ozer E, Altungoz O, Unlu M, Aygun N, Tumer S, Olgun N. Association of MYCN amplification and 1p deletion in neuroblastomas with high tumor vascularity. Appl Immunohistochem Mol Morphol. 2007 Jun;15(2):181-6.
  83. Trivella M, Pezzella F, Pastorino U, Harris AL, Altman DG. Microvessel density as a prognostic factor in non-small-cell lung carcinoma: a meta-analysis of individual patient data. Lancet Oncol. 2007 Jun;8(6):488-99.
  84. Jorgensen JM, Sorensen FB, Bendix K, Nielsen JL, Olsen ML, Funder AM, et al. Angiogenesis in non-Hodgkin's lymphoma: clinico-pathological correlations and prognostic significance in specific subtypes. Leuk Lymphoma. 2007 Mar;48(3):584-95.
  85. Suhonen KA, Anttila MA, Sillanpaa SM, Hamalainen KM, Saarikoski SV, Juhola M, et al. Quantification of angiogenesis by the Chalkley method and its prognostic significance in epithelial ovarian cancer. Eur J Cancer. 2007 May;43(8):1300-7.
  86. Birlik B, Canda S, Ozer E. Tumour vascularity is of prognostic significance in adult, but not paediatric astrocytomas. Neuropathol Appl Neurobiol. 2006 Oct;32(5):532-8.
  87. Kaklamanis L, Trichas M, Amarantidis K, Spathari N, Micheli A, Karayiannakis A, et al. VEGF expression in the colorectal adenoma-carcinoma sequence. Oncol Res. 2006;15(9):445-51.
  88. Fox SB. Quantitative angiogenesis in breast cancer. Methods Mol Med. 2006;120:161-87.
  89. Niveiro M, Aranda FI, Peiro G, Alenda C, Pico A. Immunohistochemical analysis of tumor angiogenic factors in human pituitary adenomas. Hum Pathol. 2005 Oct;36(10):1090-5.
  90. Ju YJ, Tohyama H, Kondo E, Yoshikawa T, Muneta T, Shinomiya K, et al. Effects of local administration of vascular endothelial growth factor on properties of the in situ frozen-thawed anterior cruciate ligament in rabbits. Am J Sports Med. 2006 Jan;34(1):84-91.
  91. West CC, Brown NJ, Mangham DC, Grimer RJ, Reed MW. Microvessel density does not predict outcome in high grade soft tissue sarcoma. Eur J Surg Oncol. 2005 Dec;31(10):1198-205.
  92. Benoy IH, Salgado R, Elst H, Van Dam P, Weyler J, Van Marck E, et al. Relative microvessel area of the primary tumour, and not lymph node status, predicts the presence of bone marrow micrometastases detected by reverse transcriptase polymerase chain reaction in patients with clinically non-metastatic breast cancer. Breast Cancer Res. 2005;7(2):R210-9.
  93. Fox SB, Harris AL. Histological quantitation of tumour angiogenesis. APMIS. 2004 Jul-Aug;112(7-8):413-30.
  94. Nijsten T, Colpaert CG, Vermeulen PB, Harris AL, Van Marck E, Lambert J. Cyclooxygenase-2 expression and angiogenesis in squamous cell carcinoma of the skin and its precursors: a paired immunohistochemical study of 35 cases. Br J Dermatol. 2004 Oct;151(4):837-45.
  95. Fox SB, Braganca J, Turley H, Campo L, Han C, Gatter KC, et al. CITED4 inhibits hypoxia-activated transcription in cancer cells, and its cytoplasmic location in breast cancer is associated with elevated expression of tumor cell hypoxia-inducible factor 1alpha. Cancer Res. 2004 Sep 1;64(17):6075-81.
  96. Hansen S, Sorensen FB, Vach W, Grabau DA, Bak M, Rose C. Microvessel density compared with the Chalkley count in a prognostic study of angiogenesis in breast cancer patients. Histopathology. 2004 May;44(5):428-36.
  97. Stessels F, Van den Eynden G, Van der Auwera I, Salgado R, Van den Heuvel E, Harris AL, et al. Breast adenocarcinoma liver metastases, in contrast to colorectal cancer liver metastases, display a non-angiogenic growth pattern that preserves the stroma and lacks hypoxia. Br J Cancer. 2004 Apr 5;90(7):1429-36.
  98. Offersen BV, Sorensen FB, Yilmaz M, Knoop A, Overgaard J. Chalkley estimates of angiogenesis in early breast cancer--relevance to prognosis. Acta Oncol. 2002;41(7-8):695-703.
  99. Colpaert CG, Vermeulen PB, Fox SB, Harris AL, Dirix LY, Van Marck EA. The presence of a fibrotic focus in invasive breast carcinoma correlates with the expression of carbonic anhydrase IX and is a marker of hypoxia and poor prognosis. Breast Cancer Res Treat. 2003 Sep;81(2):137-47.
  100. Marback EF, Arias VE, Paranhos A, Jr., Soares FA, Murphree AL, Erwenne CM. Tumour angiogenesis as a prognostic factor for disease dissemination in retinoblastoma. Br J Ophthalmol. 2003 Oct;87(10):1224-8.
  101. Offersen BV, Borre M, Overgaard J. Quantification of angiogenesis as a prognostic marker in human carcinomas: a critical evaluation of histopathological methods for estimation of vascular density. Eur J Cancer. 2003 May;39(7):881-90.
  102. Colpaert CG, Vermeulen PB, Benoy I, Soubry A, van Roy F, van Beest P, et al. Inflammatory breast cancer shows angiogenesis with high endothelial proliferation rate and strong E-cadherin expression. Br J Cancer. 2003 Mar 10;88(5):718-25.
  103. Hansen S, Overgaard J, Rose C, Knoop A, Laenkholm AV, Andersen J, et al. Independent prognostic value of angiogenesis and the level of plasminogen activator inhibitor type 1 in breast cancer patients. Br J Cancer. 2003 Jan 13;88(1):102-8.
  104. Brown NJ, Smyth EA, Cross SS, Reed MW. Angiogenesis induction and regression in human surgical wounds. Wound Repair Regen. 2002 Jul-Aug;10(4):245-51.
  105. McGough RL, Aswad BI, Terek RM. Pathologic neovascularization in cartilage tumors. Clin Orthop Relat Res. 2002 Apr(397):76-82.
  106. Kragh M, Quistorff B, Lund EL, Kristjansen PE. Quantitative estimates of vascularity in solid tumors by non-invasive near-infrared spectroscopy. Neoplasia. 2001 Jul-Aug;3(4):324-30.
  107. Edwards JG, Cox G, Andi A, Jones JL, Walker RA, Waller DA, et al. Angiogenesis is an independent prognostic factor in malignant mesothelioma. Br J Cancer. 2001 Sep 14;85(6):863-8.
  108. Offersen BV, Pfeiffer P, Hamilton-Dutoit S, Overgaard J. Patterns of angiogenesis in nonsmall-cell lung carcinoma. Cancer. 2001 Apr 15;91(8):1500-9.
  109. Cox G, Walker RA, Andi A, Steward WP, O'Byrne KJ. Prognostic significance of platelet and microvessel counts in operable non-small cell lung cancer. Lung Cancer. 2000 Sep;29(3):169-77.
  110. Lund EL, Bastholm L, Kristjansen PE. Therapeutic synergy of TNP-470 and ionizing radiation: effects on tumor growth, vessel morphology, and angiogenesis in human glioblastoma multiforme xenografts. Clin Cancer Res. 2000 Mar;6(3):971-8.
  111. Hansen S, Grabau DA, Sorensen FB, Bak M, Vach W, Rose C. The prognostic value of angiogenesis by Chalkley counting in a confirmatory study design on 836 breast cancer patients. Clin Cancer Res. 2000 Jan;6(1):139-46.
  112. Tokes AM, Hortovanyi E, Kulka J, Jackel M, Kerenyi T, Kadar A. Tenascin expression and angiogenesis in breast cancers. Pathol Res Pract. 1999;195(12):821-8.
  113. Chaudhary R, Bromley M, Clarke NW, Betts CD, Barnard RJ, Ryder WD, et al. Prognostic relevance of micro-vessel density in cancer of the urinary bladder. Anticancer Res. 1999 Jul-Aug;19(4C):3479-84.
  114. Decaussin M, Sartelet H, Robert C, Moro D, Claraz C, Brambilla C, et al. Expression of vascular endothelial growth factor (VEGF) and its two receptors (VEGF-R1-Flt1 and VEGF-R2-Flk1/KDR) in non-small cell lung carcinomas (NSCLCs): correlation with angiogenesis and survival. J Pathol. 1999 Aug;188(4):369-77.
  115. Li G, Simpson AH, Kenwright J, Triffitt JT. Effect of lengthening rate on angiogenesis during distraction osteogenesis. J Orthop Res. 1999 May;17(3):362-7.
  116. Makris A, Powles TJ, Kakolyris S, Dowsett M, Ashley SE, Harris AL. Reduction in angiogenesis after neoadjuvant chemoendocrine therapy in patients with operable breast carcinoma. Cancer. 1999 May 1;85(9):1996-2000.
  117. Hansen S, Grabau DA, Rose C, Bak M, Sorensen FB. Angiogenesis in breast cancer: a comparative study of the observer variability of methods for determining microvessel density. Lab Invest. 1998 Dec;78(12):1563-73.
  118. Giatromanolaki A, Koukourakis MI, Kakolyris S, Kaklamanis L, Barbatis K, O'Byrne KJ, et al. Focal expression of thymidine phosphorylase associates with CD31 positive lymphocytic aggregation and local neo-angiogenesis in non-small cell lung cancer. Anticancer Res. 1998 Jan-Feb;18(1A):71-6.
  119. Fox SB, Leek RD, Bliss J, Mansi JL, Gusterson B, Gatter KC, et al. Association of tumor angiogenesis with bone marrow micrometastases in breast cancer patients. J Natl Cancer Inst. 1997 Jul 16;89(14):1044-9.
  120. Leek RD, Lewis CE, Whitehouse R, Greenall M, Clarke J, Harris AL. Association of macrophage infiltration with angiogenesis and prognosis in invasive breast carcinoma. Cancer Res. 1996 Oct 15;56(20):4625-9.
  121. Gasparini G, Fox SB, Verderio P, Bonoldi E, Bevilacqua P, Boracchi P, et al. Determination of angiogenesis adds information to estrogen receptor status in predicting the efficacy of adjuvant tamoxifen in node-positive breast cancer patients. Clin Cancer Res. 1996 Jul;2(7):1191-8.
  122. Giatromanolaki A, Koukourakis M, O'Byrne K, Fox S, Whitehouse R, Talbot DC, et al. Prognostic value of angiogenesis in operable non-small cell lung cancer. J Pathol. 1996 May;179(1):80-8.
  123. Fox SB, Leek RD, Weekes MP, Whitehouse RM, Gatter KC, Harris AL. Quantitation and prognostic value of breast cancer angiogenesis: comparison of microvessel density, Chalkley count, and computer image analysis. J Pathol. 1995 Nov;177(3):275-83.
  124. Fox SB, Turner GD, Leek RD, Whitehouse RM, Gatter KC, Harris AL. The prognostic value of quantitative angiogenesis in breast cancer and role of adhesion molecule expression in tumor endothelium. Breast Cancer Res Treat. 1995;36(2):219-26.
  125. Dickinson AJ, Fox SB, Persad RA, Hollyer J, Sibley GN, Harris AL. Quantification of angiogenesis as an independent predictor of prognosis in invasive bladder carcinomas. Br J Urol. 1994 Dec;74(6):762-6.
  126. Fox SB, Leek RD, Smith K, Hollyer J, Greenall M, Harris AL. Tumor angiogenesis in node-negative breast carcinomas--relationship with epidermal growth factor receptor, estrogen receptor, and survival. Breast Cancer Res Treat. 1994 Jan;29(1):109-16.
  127. Batman PA, Kotler DP, Kapembwa MS, Booth D, Potten CS, Orenstein JM, et al. HIV enteropathy: crypt stem and transit cell hyperproliferation induces villous atrophy in HIV/Microsporidia-infected jejunal mucosa. AIDS. 2007 Feb 19;21(4):433-9.
  128. Need AG, Horowitz M, Morris HA, Moore R, Nordin C. Seasonal change in osteoid thickness and mineralization lag time in ambulant patients. J Bone Miner Res. 2007 May;22(5):757-61.
  129. Jakic-Razumovic J, Blazicevic V, Uzarevic B, Petrovecki M. [Prognostic significance of newly formed blood vessels in the tumors of patients with breast cancer]. Lijec Vjesn. 2002 May;124(5):123-8.
  130. Batman PA, Miller AR, Forster SM, Harris JR, Pinching AJ, Griffin GE. Jejunal enteropathy associated with human immunodeficiency virus infection: quantitative histology. J Clin Pathol. 1989 Mar;42(3):275-81.
  131. Hart IR, Kidder DE. The quantitative assessment of mucosa in canine small intestinal malabsorption. Res Vet Sci. 1978 Sep;25(2):163-7.
  132. Wright SG, Tomkins AM. Quantitative histology in giardiasis. J Clin Pathol. 1978 Aug;31(8):712-6.
  133. Bogatyreva OE, Iukhvidova ZM, Zinov'ev OI, Rogozina VA, Osina VA. [Morphometry in the diagnosis of colon villous polyps]. Ross Gastroenterol Zh. 2001(2):42-6.
  134. Severgina LO. [Comparative characteristics of morphologic types of mesangiocapillary glomerulonephritis (morphologic correlation analysis)]. Arkh Patol. 1994 May-Jun;56(3):63-5.
  135. Parsons-Wingerter P, Radhakrishnan K, Vickerman MB, Kaiser PK. Oscillation of angiogenesis with vascular dropout in diabetic retinopathy by VESsel GENeration analysis (VESGEN). Invest Ophthalmol Vis Sci. 2010 Jan;51(1):498-507.
  136. Witkin AJ, Vuong LN, Srinivasan VJ, Gorczynska I, Reichel E, Baumal CR, et al. High-speed ultrahigh resolution optical coherence tomography before and after ranibizumab for age-related macular degeneration. Ophthalmology. 2009 May;116(5):956-63.
  137. Boettcher M, Gloe T, de Wit C. Semiautomatic quantification of angiogenesis. J Surg Res. 2010 Jul;162(1):132-9.
  138. Kashani AH, Keane PA, Dustin L, Walsh AC, Sadda SR. Quantitative subanalysis of cystoid spaces and outer nuclear layer using optical coherence tomography in age-related macular degeneration. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2009 Jul;50(7):3366-73.
  139. Goutzanis LP, Papadogeorgakis N, Pavlopoulos PM, Petsinis V, Plochoras I, Eleftheriadis E, et al. Vascular fractal dimension and total vascular area in the study of oral cancer. Head Neck. 2009 Mar;31(3):298-307.
  140. Santos AF, Zaltsman AB, Martin RC, Kuzmin A, Alexandrov Y, Roquemore EP, et al. Angiogenesis: an improved in vitro biological system and automated image-based workflow to aid identification and characterization of angiogenesis and angiogenic modulators. Assay Drug Dev Technol. 2008 Oct;6(5):693-710.
  141. Lee GS, Miele LF, Turhan A, Lin M, Hanidziar D, Konerding MA, et al. Spatial calibration of structured illumination fluorescence microscopy using capillary tissue phantoms. Microsc Res Tech. 2009 Feb;72(2):85-92.
  142. Weisenthal LM, Patel N, Rueff-Weisenthal C. Cell culture detection of microvascular cell death in clinical specimens of human neoplasms and peripheral blood. J Intern Med. 2008 Sep;264(3):275-87.
  143. Bock F, Onderka J, Hos D, Horn F, Martus P, Cursiefen C. Improved semiautomatic method for morphometry of angiogenesis and lymphangiogenesis in corneal flatmounts. Exp Eye Res. 2008 Nov;87(5):462-70.
  144. Semela D, Das A, Langer D, Kang N, Leof E, Shah V. Platelet-derived growth factor signaling through ephrin-b2 regulates hepatic vascular structure and function. Gastroenterology. 2008 Aug;135(2):671-9.
  145. Schnell O, Krebs B, Wagner E, Romagna A, Beer AJ, Grau SJ, et al. Expression of integrin alphavbeta3 in gliomas correlates with tumor grade and is not restricted to tumor vasculature. Brain Pathol. 2008 Jul;18(3):378-86.
  146. McKay TL, Gedeon DJ, Vickerman MB, Hylton AG, Ribita D, Olar HH, et al. Selective inhibition of angiogenesis in small blood vessels and decrease in vessel diameter throughout the vascular tree by triamcinolone acetonide. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2008 Mar;49(3):1184-90.
  147. Kagadis GC, Spyridonos P, Karnabatidis D, Diamantopoulos A, Athanasiadis E, Daskalakis A, et al. Computerized analysis of digital subtraction angiography: a tool for quantitative in-vivo vascular imaging. J Digit Imaging. 2008 Dec;21(4):433-45.
  148. Funakoshi T, Birsner AE, D'Amato RJ. Antiangiogenic effect of oral 2-methoxyestradiol on choroidal neovascularization in mice. Exp Eye Res. 2006 Nov;83(5):1102-7.
  149. Sharma S, Sharma MC, Gupta DK, Sarkar C. Angiogenic patterns and their quantitation in high grade astrocytic tumors. J Neurooncol. 2006 Aug;79(1):19-30.
  150. Watkins G, Douglas-Jones A, Mansel RE, Jiang WG. The localisation and reduction of nuclear staining of PPARgamma and PGC-1 in human breast cancer. Oncol Rep. 2004 Aug;12(2):483-8.
  151. Blatt RJ, Clark AN, Courtney J, Tully C, Tucker AL. Automated quantitative analysis of angiogenesis in the rat aorta model using Image-Pro Plus 4.1. Comput Methods Programs Biomed. 2004 Jul;75(1):75-9.
  152. Barber PR, Vojnovic B, Ameer-Beg SM, Hodgkiss RJ, Tozer GM, Wilson J. Semi-automated software for the three-dimensional delineation of complex vascular networks. J Microsc. 2003 Jul;211(Pt 1):54-62.
  153. Fink C, Kiessling F, Bock M, Lichy MP, Misselwitz B, Peschke P, et al. High-resolution three-dimensional MR angiography of rodent tumors: morphologic characterization of intratumoral vasculature. J Magn Reson Imaging. 2003 Jul;18(1):59-65.
  154. Peters K, Schmidt H, Unger RE, Otto M, Kamp G, Kirkpatrick CJ. Software-supported image quantification of angiogenesis in an in vitro culture system: application to studies of biocompatibility. Biomaterials. 2002 Aug;23(16):3413-9.
  155. Di Bello V, Giorgi D, Bertini A, Talini E, Mengozzi G, Palagi C, et al. The role of quantitative myocardial contrast echocardiography in the study of coronary microcirculation in athlete's heart. J Am Soc Echocardiogr. 2002 Jul;15(7):678-85.
  156. Brey EM, King TW, Johnston C, McIntire LV, Reece GP, Patrick CW, Jr. A technique for quantitative three-dimensional analysis of microvascular structure. Microvasc Res. 2002 May;63(3):279-94.
  157. Setti E, Trecate G, Ferrari M, Mainardi L, Musumeci R. Breast magnetic resonance imaging: a computer-based analysis of enhancement curves. J Digit Imaging. 2001 Jun;14(2 Suppl 1):226-8.
  158. Gute D, Fraga C, Laughlin MH, Amann JF. Regional changes in capillary supply in skeletal muscle of high-intensity endurance-trained rats. J Appl Physiol. 1996 Aug;81(2):619-26.
  159. Conrad TJ, Chandler DB, Corless JM, Klintworth GK. In vivo measurement of corneal angiogenesis with video data acquisition and computerized image analysis. Lab Invest. 1994 Mar;70(3):426-34.
  160. Pascotto M, Leong-Poi H, Kaufmann B, Allrogen A, Charalampidis D, Kerut EK, et al. Assessment of ischemia-induced microvascular remodeling using contrast-enhanced ultrasound vascular anatomic mapping. J Am Soc Echocardiogr. 2007 Sep;20(9):1100-8.
  161. Grizzi F, Colombo P, Taverna G, Chiriva-Internati M, Cobos E, Graziotti P, et al. Geometry of human vascular system: is it an obstacle for quantifying antiangiogenic therapies? Appl Immunohistochem Mol Morphol. 2007 Jun;15(2):134-9.
  162. Grizzi F, Franceschini B, Fiamengo B, Russo C, Dioguardi N. Vascular architecture: is it a helpful histopathological biomarker for hepatocellular carcinoma? J Zhejiang Univ Sci B. 2007 Apr;8(4):217-20.
  163. Amyot F, Camphausen K, Siavosh A, Sackett D, Gandjbakhche A. Quantitative method to study the network formation of endothelial cells in response to tumor angiogenic factors. Syst Biol (Stevenage). 2005 Jun;152(2):61-6.
  164. Bianchi F, Rosi M, Vozzi G, Emanueli C, Madeddu P, Ahluwalia A. Microfabrication of fractal polymeric structures for capillary morphogenesis: applications in therapeutic angiogenesis and in the engineering of vascularized tissue. J Biomed Mater Res B Appl Biomater. 2007 May;81(2):462-8.
  165. Charalampidis D, Pascotto M, Kerut EK, Lindner JR. Anatomy and flow in normal and ischemic microvasculature based on a novel temporal fractal dimension analysis algorithm using contrast enhanced ultrasound. IEEE Trans Med Imaging. 2006 Aug;25(8):1079-86.
  166. Lazarovici P, Gazit A, Staniszewska I, Marcinkiewicz C, Lelkes PI. Nerve growth factor (NGF) promotes angiogenesis in the quail chorioallantoic membrane. Endothelium. 2006 Jan-Feb;13(1):51-9.
  167. Dey P. Basic principles and applications of fractal geometry in pathology: a review. Anal Quant Cytol Histol. 2005 Oct;27(5):284-90.
  168. Strauss LG, Dimitrakopoulou-Strauss A, Koczan D, Bernd L, Haberkorn U, Ewerbeck V, et al. 18F-FDG kinetics and gene expression in giant cell tumors. J Nucl Med. 2004 Sep;45(9):1528-35.
  169. Weyn B, Tjalma WA, Vermeylen P, van Daele A, Van Marck E, Jacob W. Determination of tumour prognosis based on angiogenesis-related vascular patterns measured by fractal and syntactic structure analysis. Clin Oncol (R Coll Radiol). 2004 Jun;16(4):307-16.
  170. Guidolin D, Vacca A, Nussdorfer GG, Ribatti D. A new image analysis method based on topological and fractal parameters to evaluate the angiostatic activity of docetaxel by using the Matrigel assay in vitro. Microvasc Res. 2004 Mar;67(2):117-24.
  171. Mercier F, Kitasako JT, Hatton GI. Anatomy of the brain neurogenic zones revisited: fractones and the fibroblast/macrophage network. J Comp Neurol. 2002 Sep 16;451(2):170-88.
  172. Okamoto T, Tanaka S, Stan AC, Koike T, Kase M, Makita Z, et al. Advanced glycation end products induce angiogenesis in vivo. Microvasc Res. 2002 Mar;63(2):186-95.
  173. Oczeretko E, Juczewska M, Kasacka I. Fractal geometric analysis of lung cancer angiogenic patterns. Folia Histochem Cytobiol. 2001;39 Suppl 2:75-6.
  174. Sabo E, Boltenko A, Sova Y, Stein A, Kleinhaus S, Resnick MB. Microscopic analysis and significance of vascular architectural complexity in renal cell carcinoma. Clin Cancer Res. 2001 Mar;7(3):533-7.
  175. Baish JW, Jain RK. Fractals and cancer. Cancer Res. 2000 Jul 15;60(14):3683-8.
  176. Parsons-Wingerter P, Elliott KE, Clark JI, Farr AG. Fibroblast growth factor-2 selectively stimulates angiogenesis of small vessels in arterial tree. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2000 May;20(5):1250-6.
  177. Heymans O, Fissette J, Vico P, Blacher S, Masset D, Brouers F. Is fractal geometry useful in medicine and biomedical sciences? Med Hypotheses. 2000 Mar;54(3):360-6.
  178. Parsons-Wingerter P, Elliott KE, Farr AG, Radhakrishnan K, Clark JI, Sage EH. Generational analysis reveals that TGF-beta1 inhibits the rate of angiogenesis in vivo by selective decrease in the number of new vessels. Microvasc Res. 2000 Mar;59(2):221-32.
  179. Knoll A, Schmidt S, Chapman M, Wiley D, Bulgrin J, Blank J, et al. A comparison of two controlled-release delivery systems for the delivery of amiloride to control angiogenesis. Microvasc Res. 1999 Jul;58(1):1-9.
  180. Heymans O, Blacher S, Brouers F, Pierard GE. Fractal quantification of the microvasculature heterogeneity in cutaneous melanoma. Dermatology. 1999;198(2):212-7.
  181. Vico PG, Kyriacos S, Heymans O, Louryan S, Cartilier L. Dynamic study of the extraembryonic vascular network of the chick embryo by fractal analysis. J Theor Biol. 1998 Dec 21;195(4):525-32.
  182. Baish JW, Jain RK. Cancer, angiogenesis and fractals. Nat Med. 1998 Sep;4(9):984.
  183. Parsons-Wingerter P, Lwai B, Yang MC, Elliott KE, Milaninia A, Redlitz A, et al. A novel assay of angiogenesis in the quail chorioallantoic membrane: stimulation by bFGF and inhibition by angiostatin according to fractal dimension and grid intersection. Microvasc Res. 1998 May;55(3):201-14.
  184. Kurz H, Wilting J, Sandau K, Christ B. Automated evaluation of angiogenic effects mediated by VEGF and PlGF homo- and heterodimers. Microvasc Res. 1998 Jan;55(1):92-102.
  185. Kirchner LM, Schmidt SP, Gruber BS. Quantitation of angiogenesis in the chick chorioallantoic membrane model using fractal analysis. Microvasc Res. 1996 Jan;51(1):2-14.
  186. Sandau K, Kurz H. Modelling of vascular growth processes: a stochastic biophysical approach to embryonic angiogenesis. J Microsc. 1994 Sep;175(Pt 3):205-13.
  187. Landini G, Misson G. Simulation of corneal neovascularization by inverted diffusion limited aggregation. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1993 Apr;34(5):1872-5.
  188. Mainster MA. The fractal properties of retinal vessels: embryological and clinical implications. Eye (Lond). 1990;4 ( Pt 1):235-41.
  189. Nayha V, Stenback F. Angiogenesis and expression of angiogenic agents in uterine and ovarian carcinosarcomas. APMIS. 2008 Feb;116(2):107-17.
  190. Aroni K, Tsagroni E, Kavantzas N, Patsouris E, Ioannidis E. A study of the pathogenesis of rosacea: how angiogenesis and mast cells may participate in a complex multifactorial process. Arch Dermatol Res. 2008 Mar;300(3):125-31.
  191. Nayha VV, Stenback FG. Increased angiogenesis is associated with poor prognosis of squamous cell carcinoma of the vulva. Acta Obstet Gynecol Scand. 2007;86(11):1392-7.
  192. Giannopoulos G, Kavantzas N, Parasi A, Tiniakos D, Peros G, Tzanakis N, et al. Morphometric microvascular characteristics in the prognosis of pancreatic and ampullary carcinoma. Pancreas. 2007 Jul;35(1):47-52.
  193. Angulo J, Matou S. Application of mathematical morphology to the quantification of in vitro endothelial cell organization into tubular-like structures. Cell Mol Biol (Noisy-le-grand). 2007;53(2):22-35.
  194. Stephanou A, Meskaoui G, Vailhe B, Tracqui P. The rigidity in fibrin gels as a contributing factor to the dynamics of in vitro vascular cord formation. Microvasc Res. 2007 May;73(3):182-90.
  195. Tseleni-Balafouta S, Kavantzas N, Balafoutas D, Patsouris E. Comparative study of angiogenesis in thyroid glands with Graves disease and Hashimoto's thyroiditis. Appl Immunohistochem Mol Morphol. 2006 Jun;14(2):203-7.
  196. Kvasnicka HM, Thiele J. Bone marrow angiogenesis: methods of quantification and changes evolving in chronic myeloproliferative disorders. Histol Histopathol. 2004 Oct;19(4):1245-60.
  197. Laitakari J, Nayha V, Stenback F. Size, shape, structure, and direction of angiogenesis in laryngeal tumour development. J Clin Pathol. 2004 Apr;57(4):394-401.
  198. Kragh M, Hjarnaa PJ, Bramm E, Binderup L. A versatile in vivo chamber angiogenesis assay for measuring anti-angiogenic activity in mice. Oncol Rep. 2004 Feb;11(2):303-7.
  199. Massi D, Franchi A, Borgognoni L, Paglierani M, Reali UM, Santucci M. Tumor angiogenesis as a prognostic factor in thick cutaneous malignant melanoma. A quantitative morphologic analysis. Virchows Arch. 2002 Jan;440(1):22-8.
  200. Blacher S, Devy L, Burbridge MF, Roland G, Tucker G, Noel A, et al. Improved quantification of angiogenesis in the rat aortic ring assay. Angiogenesis. 2001;4(2):133-42.
  201. Korkolopoulou P, Apostolidou E, Pavlopoulos PM, Kavantzas N, Vyniou N, Thymara I, et al. Prognostic evaluation of the microvascular network in myelodysplastic syndromes. Leukemia. 2001 Sep;15(9):1369-76.
  202. Korkolopoulou P, Konstantinidou AE, Kavantzas N, Patsouris E, Pavlopoulos PM, Christodoulou P, et al. Morphometric microvascular characteristics predict prognosis in superficial and invasive bladder cancer. Virchows Arch. 2001 Jun;438(6):603-11.
  203. Pavlopoulos PM, Konstantinidou AE, Agapitos E, Kavantzas N, Nikolopoulou P, Davaris P. A morphometric study of neovascularization in colorectal carcinoma. Cancer. 1998 Nov 15;83(10):2067-75.
  204. Norrby K. Microvascular density in terms of number and length of microvessel segments per unit tissue volume in mammalian angiogenesis. Microvasc Res. 1998 Jan;55(1):43-53.
  205. Nishida M, Koito K, Hirokawa N, Hori M, Satoh T, Hareyama M. Does contrast-enhanced ultrasound reveal tumor angiogenesis in pancreatic ductal carcinoma? A prospective study. Ultrasound Med Biol. 2009 Feb;35(2):175-85.
  206. Giannopoulos G, Pavlakis K, Parasi A, Kavatzas N, Tiniakos D, Karakosta A, et al. The expression of matrix metalloproteinases-2 and -9 and their tissue inhibitor 2 in pancreatic ductal and ampullary carcinoma and their relation to angiogenesis and clinicopathological parameters. Anticancer Res. 2008 May-Jun;28(3B):1875-81.
  207. Ryschich E, Schmidt E, Maksan SM, Klar E, Schmidt J. Expansion of endothelial surface by an increase of vessel diameter during tumor angiogenesis in experimental and hepatocellular and pancreatic cancer. World J Gastroenterol. 2004 Nov 1;10(21):3171-4.
  208. Merchant FA, Diller KR, Aggarwal SJ, Bovik AC. Angiogenesis in cultured and cryopreserved pancreatic islet grafts. Transplantation. 1997 Jun 15;63(11):1652-60.
  209. Merchant FA, Aggarwal SJ, Diller KR, Bovik AC. In-vivo analysis of angiogenesis and revascularization of transplanted pancreatic islets using confocal microscopy. J Microsc. 1994 Dec;176(Pt 3):262-75.
  210. Thomassin-Naggara I, Bazot M, Darai E, Callard P, Thomassin J, Cuenod CA. Epithelial ovarian tumors: value of dynamic contrast-enhanced MR imaging and correlation with tumor angiogenesis. Radiology. 2008 Jul;248(1):148-59.
  211. Alcazar JL. Tumor angiogenesis assessed by three-dimensional power Doppler ultrasound in early, advanced and metastatic ovarian cancer: A preliminary study. Ultrasound Obstet Gynecol. 2006 Sep;28(3):325-9.
  212. Yang LH, Wang KF, Zhou YP, Li ML. [Role and mechanism of nuclear factor kappa B in angiogenesis of human ovarian carcinoma]. Ai Zheng. 2004 May;23(5):531-4.
  213. Markland FS, Shieh K, Zhou Q, Golubkov V, Sherwin RP, Richters V, et al. A novel snake venom disintegrin that inhibits human ovarian cancer dissemination and angiogenesis in an orthotopic nude mouse model. Haemostasis. 2001 May-Dec;31(3-6):183-91.
  214. Schoell WM, Pieber D, Reich O, Lahousen M, Janicek M, Guecer F, et al. Tumor angiogenesis as a prognostic factor in ovarian carcinoma: quantification of endothelial immunoreactivity by image analysis. Cancer. 1997 Dec 15;80(12):2257-62.
  215. Dong W, Li X, Lu X, Di B, Ma J, Cui L. [Expression of Survivin and its correlation with tumor angiogenesis in differentiated thyroid carcinomas]. Lin Chuang Er Bi Yan Hou Ke Za Zhi. 2006 Nov;20(21):967-9.
  216. Klein M, Brunaud L, Muresan M, Barbe F, Marie B, Sapin R, et al. Recombinant human thyrotropin stimulates thyroid angiogenesis in vivo. Thyroid. 2006 Jun;16(6):531-6.
  217. Kavantzas N, Tseleni-Balafouta S, Davaris P. Computerized nuclear morphometry and quantitation of angiogenesis in thyroid neoplasms. J Exp Clin Cancer Res. 2002 Jun;21(2):247-54.
  218. Carter WB, Uy K, Ward MD, Hoying JB. Parathyroid-induced angiogenesis is VEGF-dependent. Surgery. 2000 Sep;128(3):458-64.
  219. Carter WB, Crowell SL, Boswell CA, Williams SK. Stimulation of angiogenesis by canine parathyroid tissue. Surgery. 1996 Dec;120(6):1089-94.
  220. Ishimoto H, Minegishi K, Higuchi T, Furuya M, Asai S, Kim SH, et al. The periphery of the human fetal adrenal gland is a site of angiogenesis: zonal differential expression and regulation of angiogenic factors. J Clin Endocrinol Metab. 2008 Jun;93(6):2402-8.
  221. Ishimoto H, Ginzinger DG, Jaffe RB. Adrenocorticotropin preferentially up-regulates angiopoietin 2 in the human fetal adrenal gland: implications for coordinated adrenal organ growth and angiogenesis. J Clin Endocrinol Metab. 2006 May;91(5):1909-15.
  222. Bertossi M, Virgintino D, Coltey P, Errede M, Mancini L, Roncali L. Angiogenesis and endothelium phenotype expression in embryonic adrenal gland and cerebellum grafted onto chorioallantoic membrane. Angiogenesis. 1999;3(4):305-15.
  223. Bernini GP, Moretti A, Bonadio AG, Menicagli M, Viacava P, Naccarato AG, et al. Angiogenesis in human normal and pathologic adrenal cortex. J Clin Endocrinol Metab. 2002 Nov;87(11):4961-5.
  224. Nitzsche B, Gloesenkamp C, Schrader M, Ocker M, Preissner R, Lein M, et al. Novel compounds with antiangiogenic and antiproliferative potency for growth control of testicular germ cell tumours. Br J Cancer. 2010 Jun 29;103(1):18-28.
  225. Diamantopoulos N, Boutis AL, Koratzis I, Andreadis C, Galaktidou G, Mouratidou D, et al. Matrix metalloproteinases and proangiogenic factors in testicular germ cell tumors. J BUON. 2010 Jan-Mar;15(1):116-21.
  226. Harrison MR, Huang W, Liu G, Gee J. Response to antiangiogenesis therapy in a patient with advanced adult-type testicular granulosa cell tumor. Oncology (Williston Park). 2009 Aug;23(9):792-5.
  227. Arrieta O, Michel Ortega RM, Angeles-Sanchez J, Villarreal-Garza C, Aviles-Salas A, Chanona-Vilchis JG, et al. Serum human chorionic gonadotropin is associated with angiogenesis in germ cell testicular tumors. J Exp Clin Cancer Res. 2009;28:120.
  228. Calaminus G, Schneider DT, Weissbach L, Schonberger S, Okpanyi V, Leuschner I, et al. Survival after an antiangiogenetic therapy and surgery in a wide spread growing teratoma originating from a testicular mixed malignant germ cell tumor. Klin Padiatr. 2009 May-Jun;221(3):136-40.
  229. Castillo-Avila W, Piulats JM, Garcia Del Muro X, Vidal A, Condom E, Casanovas O, et al. Sunitinib inhibits tumor growth and synergizes with cisplatin in orthotopic models of cisplatin-sensitive and cisplatin-resistant human testicular germ cell tumors. Clin Cancer Res. 2009 May 15;15(10):3384-95.
  230. Carvalho M, Mateus L, Afonso F, Van Harten S, Cardoso LA, Redmer DA, et al. Testicular angiogenic activity in response to food restriction in rabbits. Reproduction. 2009 Mar;137(3):509-15.
  231. Martinschek A, Ruf CG, Sparwasser C, Schmelz HU. [Value of targeted treatment for testicular cancer: from molecular approaches to clinical possibilities]. Urologe A. 2008 Oct;47(10):1328-33.
  232. Deschrevel B, Tranchepain F, Vincent JC. Chain-length dependence of the kinetics of the hyaluronan hydrolysis catalyzed by bovine testicular hyaluronidase. Matrix Biol. 2008 Jun;27(5):475-86.
  233. Chieffi P. Molecular targets for the treatment of testicular germ cell tumors. Mini Rev Med Chem. 2007 Jul;7(7):755-9.
  234. Schneider A, Kollias A, Woziwodzki J, Stauch G. [Testicular metastasis of a metachronous small cell neuroendocrinic prostate cancer after anti-hormonal therapy of a prostatic adenocarcinoma. Case report and literature review]. Urologe A. 2006 Jan;45(1):75-80.
  235. Aigner A, Brachmann P, Beyer J, Jager R, Raulais D, Vigny M, et al. Marked increase of the growth factors pleiotrophin and fibroblast growth factor-2 in serum of testicular cancer patients. Ann Oncol. 2003 Oct;14(10):1525-9.
  236. Abraham D, Abri S, Hofmann M, Holtl W, Aharinejad S. Low dose carboplatin combined with angiostatic agents prevents metastasis in human testicular germ cell tumor xenografts. J Urol. 2003 Oct;170(4 Pt 1):1388-93.
  237. Tfelt-Hansen J, Schwarz P, Terwilliger EF, Brown EM, Chattopadhyay N. Calcium-sensing receptor induces messenger ribonucleic acid of human securin, pituitary tumor transforming gene, in rat testicular cancer. Endocrinology. 2003 Dec;144(12):5188-93.
  238. Adam M, Schmidt D, Wardelmann E, Wernert N, Albers P. Angiogenetic protooncogene ets-1 induced neovascularization is involved in the metastatic process of testicular germ cell tumors. Eur Urol. 2003 Sep;44(3):329-36.
  239. Haggstrom Rudolfsson S, Johansson A, Franck Lissbrant I, Wikstrom P, Bergh A. Localized expression of angiopoietin 1 and 2 may explain unique characteristics of the rat testicular microvasculature. Biol Reprod. 2003 Oct;69(4):1231-7.
  240. Lissbrant IF, Lissbrant E, Persson A, Damber JE, Bergh A. Endothelial cell proliferation in male reproductive organs of adult rat is high and regulated by testicular factors. Biol Reprod. 2003 Apr;68(4):1107-11.
  241. Bentas W, Beecken WD, Glienke W, Binder J, Schuldes H. Serum levels of basic fibroblast growth factor reflect disseminated disease in patients with testicular germ cell tumors. Urol Res. 2003 Feb;30(6):390-3.
  242. Rahmanian M, Heldin P. Testicular hyaluronidase induces tubular structures of endothelial cells grown in three-dimensional collagen gel through a CD44-mediated mechanism. Int J Cancer. 2002 Feb 10;97(5):601-7.
  243. Mezquita J, Mezquita B, Pau M, Mezquita C. Characterization of a novel form of angiopoietin-2 (Ang-2B) and expression of VEGF and angiopoietin-2 during chicken testicular development and regression. Biochem Biophys Res Commun. 1999 Jul 5;260(2):492-8.
  244. Fukuda S, Shirahama T, Imazono Y, Tsushima T, Ohmori H, Kayajima T, et al. Expression of vascular endothelial growth factor in patients with testicular germ cell tumors as an indicator of metastatic disease. Cancer. 1999 Mar 15;85(6):1323-30.
  245. Albers P, Orazi A, Ulbright TM, Miller GA, Haidar JH, Donohue JP, et al. Prognostic significance of immunohistochemical proliferation markers (Ki-67/MIB-1 and proliferation-associated nuclear antigen), p53 protein accumulation, and neovascularization in clinical stage A nonseminomatous testicular germ cell tumors. Mod Pathol. 1995 Jun;8(5):492-7.
  246. Olivarez D, Ulbright T, DeRiese W, Foster R, Reister T, Einhorn L, et al. Neovascularization in clinical stage A testicular germ cell tumor: prediction of metastatic disease. Cancer Res. 1994 May 15;54(10):2800-2.
  247. Mayerhofer A, Bartke A. Developing testicular microvasculature in the golden hamster, Mesocricetus auratus: a model for angiogenesis under physiological conditions. Acta Anat (Basel). 1990;139(1):78-85.
  248. Mayerhofer A, Sinha Hikim AP, Bartke A, Russell LD. Changes in the testicular microvasculature during photoperiod-related seasonal transition from reproductive quiescence to reproductive activity in the adult golden hamster. Anat Rec. 1989 Aug;224(4):495-507.
  249. Huseby RA, Currie C, Lagerborg VA, Garb S. Angiogenesis about and within grafts of normal testicular tissue: a comparison with transplanted neoplastic tissue. Microvasc Res. 1975 Nov;10(3):396-413.
  250. Villegas J. Time course of angiogenesis in solid pineal autografts. Cell Tissue Res. 2004 Mar;315(3):349-59.
  251. Taylor CM, McLaughlin B, Weiss JB, Smith I. Bovine and human pineal glands contain substantial quantities of endothelial cell stimulating angiogenic factor. J Neural Transm. 1988;71(1):79-84.
  252. Baxter IH, Schuppe H, Jackson C, Nansen C. Using image analysis to design a prototype autodissemination device intended for the biorational control of Plodia interpunctella. J Econ Entomol. 2009 Feb;102(1):453-65.
  253. Borem LM, Feigal RJ. Reducing microleakage of sealants under salivary contamination: digital-image analysis evaluation. Quintessence Int. 1994 Apr;25(4):283-9.
  254. Hansen TB, Knochel S. Image analysis method for evaluation of specific and non-specific hand contamination. J Appl Microbiol. 2003;94(3):483-94.
  255. Kumar A, Yerneni LK. Semi-automated relative quantification of cell culture contamination with mycoplasma by Photoshop-based image analysis on immunofluorescence preparations. Biologicals. 2009 Jan;37(1):55-60.
  256. Roper JC, Brown DM, Sullivan MA, Schoonhoven R, Swenberg JA, Pfaender FK. Epifluorescence microscopy and image analysis of high-level polycyclic aromatic hydrocarbon contamination in soils. Environ Toxicol Chem. 2006 Dec;25(12):3093-100.
  257. Wantanaphong J, Mooney SJ, Bailey EH. Quantification of pore clogging characteristics in potential permeable reactive barrier (PRB) substrates using image analysis. J Contam Hydrol. 2006 Aug 10;86(3-4):299-320.
  258. Zeffiro T. Clinical functional image analysis: artifact detection and reduction. Neuroimage. 1996 Dec;4(3 Pt 3):S95-100.
  259. Nailon WH, Ironside JW. Variant Creutzfeldt-Jakob disease: immunocytochemical studies and image analysis. Microsc Res Tech. 2000 Jul 1;50(1):2-9.
  260. Sutherland K, Ironside JW. Novel application of image analysis to the detection of spongiform change. Anal Quant Cytol Histol. 1994 Dec;16(6):430-4.
  261. Sadaphal P, Rao J, Comstock GW, Beg MF. Image processing techniques for identifying Mycobacterium tuberculosis in Ziehl-Neelsen stains. Int J Tuberc Lung Dis. 2008 May;12(5):579-82.
  262. Ross NE, Pritchard CJ, Rubin DM, Duse AG. Automated image processing method for the diagnosis and classification of malaria on thin blood smears. Med Biol Eng Comput. 2006 May;44(5):427-36.
  263. Canton R, Perez-Vazquez M, Oliver A, Sanchez Del Saz B, Gutierrez MO, Martinez-Ferrer M, et al. Evaluation of the Wider system, a new computer-assisted image-processing device for bacterial identification and susceptibility testing. J Clin Microbiol. 2000 Apr;38(4):1339-46.
  264. Kildeso J, Nielsen BH. Exposure assessment of airborne microorganisms by fluorescence microscopy and image processing. Ann Occup Hyg. 1997 Apr;41(2):201-16.
  265. Takeshita F, Iyama S, Ayukawa Y, Suetsugu T, Oishi M. Abscess formation around a hydroxyapatite-coated implant placed into the extraction socket with autogenous bone graft. A histological study using light microscopy, image processing, and confocal laser scanning microscopy. J Periodontol. 1997 Mar;68(3):299-305.
  266. Veenendaal D, de Boer J, Meijer BC, van der Waaij D, Wilkinson MH. Micromorphometrical analysis of rodent related (SPF) and unrelated (human) gut microbial flora in germfree mice by digital image processing. Epidemiol Infect. 1996 Feb;116(1):35-40.
  267. Gribbon LT, Barer MR. Oxidative metabolism in nonculturable Helicobacter pylori and Vibrio vulnificus cells studied by substrate-enhanced tetrazolium reduction and digital image processing. Appl Environ Microbiol. 1995 Sep;61(9):3379-84.
  268. Wilkinson MH. Shading correction and calibration in bacterial fluorescence measurement by image processing system. Comput Methods Programs Biomed. 1994 Aug;44(2):61-7.
  269. Gustafson M, Magnusson KE. A novel principle for quantitation of fast intracellular calcium changes using Fura-2 and a modified image processing system--applications in studies of neutrophil motility and phagocytosis. Cell Calcium. 1992 Aug;13(8):473-86.
  270. Gustafsson M, Magnusson KE. A distributed image-processing system for measurements of intracellular calcium in living cells. Comput Methods Programs Biomed. 1991 Dec;36(4):199-221.
  271. Apperloo-Renkema HZ, Wilkinson MH, Oenema DG, van der Waaij D. Objective quantitation of serum antibody titres against Enterobacteriaceae using indirect immunofluorescence, read by videocamera and image processing system. Med Microbiol Immunol. 1991;180(2):93-100.
  272. Zheng YC, Zhu ZR, Liang PJ, Chen JF. Image processing by microcomputer on ultrastructure of griseofulvin-resistant fungi in favus. J Tongji Med Univ. 1990;10(1):60-4.
  273. Obenauer-Kutner LJ, Halperin R, Ihnat PM, Tully CP, Bordens RW, Grace MJ. Use of an automated image processing program to quantify recombinant adenovirus particles. Microsc Microanal. 2005 Feb;11(1):37-41.
  274. van Heel M, Harauz G, Orlova EV, Schmidt R, Schatz M. A new generation of the IMAGIC image processing system. J Struct Biol. 1996 Jan-Feb;116(1):17-24.
  275. Crowther RA, Henderson R, Smith JM. MRC image processing programs. J Struct Biol. 1996 Jan-Feb;116(1):9-16.
  276. Harms H, Gunzer U, Baumann I, Serbouti S. Malignancy-associated changes in monocytes and lymphocytes in acute leukemias measured by high-resolution image processing. Anal Quant Cytol Histol. 1993 Dec;15(6):371-8.
  277. Yee T. Image processing software for enhanced visualization of faint or noisy autoradiographic images. Biotechniques. 1991 Jun;10(6):786-9.
  278. Stewart M. Computer image processing of electron micrographs of biological structures with helical symmetry. J Electron Microsc Tech. 1988 Aug;9(4):325-58.
  279. Lepault J, Dargent B, Tichelaar W, Rosenbusch JP, Leonard K, Pattus F. Three-dimensional reconstruction of maltoporin from electron microscopy and image processing. EMBO J. 1988 Jan;7(1):261-8.
  280. Hardy W, Vance J, Jones K, Kokubo Y. Digital image processing: a path to better pictures. Scan Electron Microsc. 1982(Pt 2):485-94.
  281. Kokubo Y, Hardy WH. Digital image processing: a path to better pictures. Ultramicroscopy. 1982;8(3):277-86.
  282. Horne RW. Special specimen preparation methods for image processing in transmission electron microscopy: a review. J Microsc. 1978 Aug;113(3):241-56.
  283. Aebi U, ten Heggeler B, Onorato L, Kistler J, Showe MK. New method for localizing proteins in periodic structures: Fab fragment labeling combined with image processing of electron micrographs. Proc Natl Acad Sci U S A. 1977 Dec;74(12):5514-18.
  284. Daims H. Use of fluorescence in situ hybridization and the daime image analysis program for the cultivation-independent quantification of microorganisms in environmental and medical samples. Cold Spring Harb Protoc. 2009 Jul;2009(7):pdb prot5253.
  285. Aminalai A, Rosch T, Aschenbeck J, Mayr M, Drossel R, Schroder A, et al. Live Image Processing Does Not Increase Adenoma Detection Rate During Colonoscopy: A Randomized Comparison Between FICE and Conventional Imaging (Berlin Colonoscopy Project 5, BECOP-5). Am J Gastroenterol. 2010 Nov;105(11):2383-8.
  286. Sanchez-Yague A, Nguyen-Tang T. Swallowable capsule technology: current perspectives and future directions in image acquisition and processing. Endoscopy. 2009 Aug;41(8):731; author reply 2.
  287. Igarashi T, Suzuki H, Naya Y. Computer-based endoscopic image-processing technology for endourology and laparoscopic surgery. Int J Urol. 2009 Jun;16(6):533-43.
  288. Igarashi T, Zenbutsu S, Yamanishi T, Naya Y. Three-dimensional image processing system for the ureter and urethra using endoscopic video. J Endourol. 2008 Aug;22(8):1569-72.
  289. Bulat J, Duda K, Duplaga M, Fraczek R, Skalski A, Socha M, et al. Data processing tasks in wireless GI endoscopy: image-based capsule localization & navigation and video compression. Conf Proc IEEE Eng Med Biol Soc. 2007;2007:2815-8.
  290. Zhang JH, Peng CL, Zhao DC, Yang L. [An image acquisition & processing system of the wireless endoscope based on DSP]. Zhongguo Yi Liao Qi Xie Za Zhi. 2006 Jul;30(4):245-6.
  291. George I, Mastrangelo M, Jr., Hoskins J, Witzke W, Stich J, Garrison J, et al. Using semi-automated image processing and desktop systems to incorporate actual patient volumetric data in immersive surgical planning and viewing systems for multiple patients. Stud Health Technol Inform. 2002;85:155-9.
  292. Lohscheller J, Dollinger M, Schuster M, Eysholdt U, Hoppe U. The laryngectomee substitute voice: image processing of endoscopic recordings by fusion with acoustic signals. Methods Inf Med. 2003;42(3):277-81.
  293. Ogura T. [CT-pancreatography using various image processing technique]. Nippon Hoshasen Gijutsu Gakkai Zasshi. 2003 Jan;59(1):55-9.
  294. Kawaida M, Fukuda H, Kohno N. Digital image processing of laryngeal lesions by electronic videoendoscopy. Laryngoscope. 2002 Mar;112(3):559-64.
  295. Dammann F. [Image processing in radiology]. Rofo. 2002 May;174(5):541-50.
  296. Cristoforoni P. Image digitalization and processing: the role of informatics in colposcopy. Tumori. 2001 Sep-Oct;87(5):S16-7.
  297. Hanna G, Cuschieri A. Image display technology and image processing. World J Surg. 2001 Nov;25(11):1419-27.
  298. Schmidt H, Stasche N. [Digital image processing and new media in ENT endoscopy--possibilities and future]. Laryngorhinootologie. 2000 Nov;79(11):641-2.
  299. Konen W, Scholz M, Tombrock S. The VN project: endoscopic image processing for neurosurgery. Comput Aided Surg. 1998;3(3):144-8.
  300. Scholz M, Konen W, Tombrock S, Fricke B, Adams L, von During M, et al. Development of an endoscopic navigation system based on digital image processing. Comput Aided Surg. 1998;3(3):134-43.
  301. Witt H, Manneberg G, Slezak P, Watanabe M, Kronander T. Quantitative endoscopic classification of esophagitis by means of computerized image processing. Part II: Experimental study. Hepatogastroenterology. 1996 Sep-Oct;43(11):1321-6.
  302. Weber R, Keerl R. [Applications of modern image data processing in clinico-rhinologic research]. Eur Arch Otorhinolaryngol Suppl. 1996;1:271-96.
  303. Munakata A, Nakajima H, Sasaki Y, Hada R. Does portal hypertension modify colonic mucosal vasculature? Quantification of alteration by image processing and topology. Am J Gastroenterol. 1995 Nov;90(11):1997-2001.
  304. Hirata M, Ishihama S, Sanjo K, Idezuki Y. Study of new prognostic factors of esophageal variceal rupture by use of image processing with a video endoscope. Surgery. 1994 Jul;116(1):8-16.
  305. Fujino MA. Can endoscopic measurement be made reliable, elegant, and economical? The search for computerized image processing. Endoscopy. 1994 Jun;26(5):486-7.
  306. Vakil N, Smith W, Bourgeois K, Everbach EC, Knyrim K. Endoscopic measurement of lesion size: improved accuracy with image processing. Gastrointest Endosc. 1994 Mar-Apr;40(2 Pt 1):178-83.
  307. Kohli Y, Suzuki K. [Study on image processing of magnify type electronic endoscopic pictures of the gastric polyp]. Nippon Rinsho. 1991 Dec;49(12):49-54.
  308. Franceschi D, Stellato TA. Microcomputer image processing in gastrointestinal endoscopy. Am Surg. 1990 Mar;56(3):128-30.
  309. Baumgartner R, Unsold E. High contrast fluorescence imaging using two-wavelength laser excitation and image processing. J Photochem Photobiol B. 1987 Sep;1(1):130-2.
  310. Yoshida Y, Kimura K, Kato H, Kikuchi K. [Image processing, quantification, and analysis. a. Processing of fine features and enhancement of the image]. Nippon Rinsho. 1987 Jun;45(6):1205-9.
  311. Yamaguchi K, Matsumoto T, Kondoh Y, Yoshida S, Fujimoto S, Nakajima M, et al. [Possibility in image processing in electronic endoscopy]. Nippon Rinsho. 1987 Jun;45(6):1192-9.
  312. Itoshima T, Tanaka R, Ando M, Ito T, Tomoda J. [Image processing devices related to electronic endoscopy]. Nippon Rinsho. 1987 Jun;45(6):1174-9.
  313. Ono R, Ikeda S. [A new TV-bronchoscopy method using a video endoscope and digital processing of the endoscopic color image]. Gan To Kagaku Ryoho. 1986 Apr;13(4 Pt 2):1653-60.
  314. Kimura A, Onami S. Computer simulations and image processing reveal length-dependent pulling force as the primary mechanism for C. elegans male pronuclear migration. Dev Cell. 2005 May;8(5):765-75.
  315. Keefe D, Tran P, Pellegrini C, Oldenbourg R. Polarized light microscopy and digital image processing identify a multilaminar structure of the hamster zona pellucida. Hum Reprod. 1997 Jun;12(6):1250-2.
  316. Markiewicz T, Osowski S, Patera J, Kozlowski W. Image processing for accurate cell recognition and count on histologic slides. Anal Quant Cytol Histol. 2006 Oct;28(5):281-91.
  317. Takeshita F, Murai K, Iyama S, Ayukawa Y, Suetsugu T. Uncontrolled diabetes hinders bone formation around titanium implants in rat tibiae. A light and fluorescence microscopy, and image processing study. J Periodontol. 1998 Mar;69(3):314-20.
  318. Takeshita F, Iyama S, Ayukawa Y, Suetsugu T, Oishi M. Failing hollow implants examined by light microscopy and image processing. J Periodontol. 1997 Mar;68(3):293-8.
  319. Takeshita F, Iyama S, Ayukawa Y, Akedo H, Suetsugu T. Study of bone formation around dense hydroxyapatite implants using light microscopy, image processing and confocal laser scanning microscopy. Biomaterials. 1997 Feb;18(4):317-22.
  320. Takeshita F, Murai K, Ayukawa Y, Suetsugu T. Effects of aging on titanium implants inserted into the tibiae of female rats using light microscopy, SEM, and image processing. J Biomed Mater Res. 1997 Jan;34(1):1-8.
  321. Buno I, Lopez-Fernandez C, Fernandez JL, Llamas P, Diez-Martin JL, Gosalvez J. Improving chimaerism quantification in bone marrow transplant recipients by image processing and analysis after restriction endonuclease in situ digestion (IPA-REISD). Leukemia. 1996 Jul;10(7):1232-6.
  322. Uyama C, Takahashi Y. [Image processing on the distribution patterns of In-111 chloride and Tc-99m colloid recorded simultaneously from the bone marrow]. Kaku Igaku. 1987 Oct;24(10):1499-510.
  323. Lipkin LE, Lipkin BS. Computers in the clinical pathologic laboratory: chemistry and image processing. Annu Rev Biophys Bioeng. 1975;4(00):529-77.
  324. Ostoa-Saloma P, Esquivel-Velazquez M, Ostoa-Jacobo P, Larralde C. Strategies of statistical image analysis of 2D immunoblots: the case of IgG response in experimental Taenia crassiceps cysticercosis. J Immunol Methods. 2009 Dec 31;351(1-2):46-54.
  325. Frean JA. Reliable enumeration of malaria parasites in thick blood films using digital image analysis. Malar J. 2009;8:218.
  326. Scivetti M, Lucchese A, Crincoli V, Pilolli GP, Favia G. Confocal laser scanning microscopy of liesegang rings in odontogenic cysts: analysis of three-dimensional image reconstruction. Ultrastruct Pathol. 2009 Mar-Apr;33(2):48-51.
  327. Bruschi F, Marucci G, Pozio E, Masetti M. Evaluation of inflammatory responses against muscle larvae of different Trichinella species by an image analysis system. Vet Parasitol. 2009 Feb 23;159(3-4):258-62.
  328. Frean J. Improving quantitation of malaria parasite burden with digital image analysis. Trans R Soc Trop Med Hyg. 2008 Nov;102(11):1062-3.
  329. Valero MA, Panova M, Mas-Coma S. Phenotypic analysis of adults and eggs of Fasciola hepatica by computer image analysis system. J Helminthol. 2005 Sep;79(3):217-25.
  330. Phipps AN, Martin-Short MR, Littlewood L, Blanchflower SE, Gration KA. Disposition of 3H-selamectin and 3H-ivermectin in the brain of the cat flea Ctenocephalides felis felis using micro-image analysis. Vet Parasitol. 2005 Jul 15;131(1-2):89-94.
  331. Gering E, Atkinson CT. A rapid method for counting nucleated erythrocytes on stained blood smears by digital image analysis. J Parasitol. 2004 Aug;90(4):879-81.
  332. Belton CM, Izutsu KT, Goodwin PC, Park Y, Lamont RJ. Fluorescence image analysis of the association between Porphyromonas gingivalis and gingival epithelial cells. Cell Microbiol. 1999 Nov;1(3):215-23.
  333. Drut R, Araujo MO. Image analysis of nucleomegalic cells in Chagas' disease placentitis. Placenta. 2000 Mar-Apr;21(2-3):280-2.
  334. Sartelet H, Garraud O, Lorenzato M, Rogier C, Milko-Sartelet I, Huerre M, et al. Quantitative computer image analysis of chondroitin sulfate A expression in placentas infected with Plasmodium falciparum. J Histochem Cytochem. 1999 Jun;47(6):751-6.
  335. Kucera J, Reznicky M. Differentiation of species of Eimeria from the fowl using a computerized image-analysis system. Folia Parasitol (Praha). 1991;38(2):107-13.
  336. Borisevich A, Ovchinnikov OS, Chang HJ, Oxley MP, Yu P, Seidel J, et al. Mapping octahedral tilts and polarization across a domain wall in BiFeO3 from Z-contrast scanning transmission electron microscopy image atomic column shape analysis. ACS Nano. 2010 Oct 26;4(10):6071-9.
  337. Sader K, Brown A, Brydson R, Bleloch A. Quantitative analysis of image contrast in phase contrast STEM for low dose imaging. Ultramicroscopy. 2010 Sep;110(10):1324-31.
  338. Mulinari DR, Cruz TG, Cioffi MO, Voorwald HJ, Da Silva ML, Rocha GJ. Image analysis of modified cellulose fibers from sugarcane bagasse by zirconium oxychloride. Carbohydr Res. 2010 Sep 3;345(13):1865-71.
  339. Ishii N, Okuro K, Kinbara K, Aida T. Image analysis of alpha/beta-tubulin rings in two-dimensional crystalline arrays of periodic mesoporous nanostructures. J Biochem. 2010 Apr;147(4):555-63.
  340. Bennis H, Benslimane R, Vicini S, Mairani A, Princi E. Fibre width measurement and quantification of filler size distribution in paper-based materials by SEM and image analysis. J Electron Microsc (Tokyo). 2010;59(2):91-102.

Полезные ссылки:

Thyroid Cancer – UK incidence statistics.
Available at: http://info.cancerresearchuk.org/cancerstats/types/thyroid/incidence/?view=PrinterFriendly&a=5440. Retrieved August 21, 2010.

"Image J" software.
Available at: http://rsbweb.nih.gov/ij/download.html. Retrieved August 21, 2010.

Automated Cancer Information System. European Cancer Registry.
Available at: http://www-dep.iarc.fr/accis.htm. Retrieved August 21, 2010.

"Image Lab" software package.
Available at: http://www.aptrio.com/Education/Science/image-lab-366.html. Retrieved August 21, 2010.

"Cell Profiler" computer program.
Available at: http://www.cellprofiler.org/examples.htm. Retrieved August 21, 2010.

"Angioquant" software.
Available at: http://www.cs.tut.fi/sgn/csb/angioquant/. Retrieved August 21, 2010.

"Cell Analyst" image processing pogram.
Available at: http://www.fileheap.com/download-cellanalyst-from-assaysoft-36949.html. Retrieved August 21, 2010.

GIMP image manipulation software.
Available at: http://www.gimp.org/. Retrieved August 21, 2010.
http://www.emsdiasum.com/microscopy/products/magnifier/graticules.aspx

http://www.2spi.com/catalog/magnifiers/eye-piece-reticles-Graticules-Chalkley-Point-Array-Mode-NG52.shtml

http://en.wikipedia.org/wiki/Web_search_engine

УДК 616.44–006–078.4.
Работа выполнена в рамках проектов CRDF-4028 и МНТЦ-1682

Согласен Данный веб-сайт содержит информацию для специалистов в области медицины. В соответствии с действующим законодательством доступ к такой информации может быть предоставлен только медицинским и фармацевтическим работникам. Нажимая «Согласен», вы подтверждаете, что являетесь медицинским или фармацевтическим работником и берете на себя ответственность за последствия, вызванные возможным нарушением указанного ограничения. Информация на данном сайте не должна использоваться пациентами для самостоятельной диагностики и лечения и не может быть заменой очной консультации врача.

Сайт использует файлы cookies для более комфортной работы пользователя. Продолжая просмотр страниц сайта, вы соглашаетесь с использованием файлов cookies, а также с обработкой ваших персональных данных в соответствии с Политикой конфиденциальности.